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Indução de um torpor

Sep 12, 2023

Nature Metabolism volume 5, páginas 789–803 (2023) Cite este artigo

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O torpor é um estado de conservação de energia no qual os animais diminuem drasticamente sua taxa metabólica e temperatura corporal para sobreviver a condições ambientais adversas. Aqui, relatamos a indução não invasiva, precisa e segura de um estado hipotérmico e hipometabólico tipo torpor em roedores por estimulação ultrassônica transcraniana remota na área pré-óptica (POA) do hipotálamo. Alcançamos um estado de torpor de longa duração (> 24 h) em camundongos por meio de controle de feedback em circuito fechado de estimulação por ultrassom com detecção automatizada da temperatura corporal. A hipotermia e o hipometabolismo induzidos por ultrassom (UIH) são desencadeados pela ativação dos neurônios POA, envolvem o hipotálamo dorsomedial como uma região cerebral a jusante e subsequente inibição do tecido adiposo marrom termogênico. O sequenciamento de RNA de núcleo único de neurônios POA revela TRPM2 como um canal iônico sensível a ultrassom, cujo knockdown suprime a UIH. Também demonstramos que a HUI é viável em um animal não torpido, o rato. Nossos achados estabelecem a HUI como uma tecnologia promissora para a indução não invasiva e segura de um estado de torpor.

O torpor, como a hibernação, é um estado fisiológico no qual os mamíferos suprimem ativamente o metabolismo, reduzem a temperatura corporal e desaceleram outros processos vitais para conservar energia e sobreviver a condições fatais e temperaturas ambientais frias1. O conceito de induzir hipotermia semelhante ao torpor e hipometabolismo por meios artificiais foi inicialmente proposto em 1960 como uma solução biomédica para reduzir o consumo de energia durante voos espaciais tripulados de longa duração2,3. A hipotermia semelhante ao torpor e o hipometabolismo também podem aumentar a probabilidade de sobrevivência de pacientes em condições de risco de vida (por exemplo, ataque cardíaco ou acidente vascular cerebral) ao retardar o metabolismo e a progressão da doença4.

A indução não invasiva e segura de um estado semelhante ao torpor foi considerada ficção científica restrita a filmes e romances5,6. Apesar de várias décadas de pesquisa, ainda não foi alcançado. O conceito original propunha que a hibernação é regulada por substâncias sanguíneas endógenas7 e grandes esforços foram dedicados à busca de substâncias endógenas que induzam um estado semelhante ao torpor através da supressão sistêmica do metabolismo8,9. Acredita-se agora que o torpor é controlado pelo sistema nervoso central (SNC) para coordenar com precisão numerosas funções10,11,12. Foi relatado que a injeção intracraniana direta de agentes farmacêuticos direcionados às vias do SNC induziu um estado hipotérmico profundo semelhante ao torpor natural13,14. Recentes estudos inovadores identificaram várias populações neuronais no hipotálamo POA que regulam o torpor e a hibernação em roedores11,12,15. A engenharia genética dessas populações neuronais para manipulação optogenética e quimiogenética obteve características comportamentais e fisiológicas críticas de torpor/hibernação em camundongos11,12,15. Embora esses avanços tecnológicos na indução de um estado de torpor sejam promissores, essas abordagens requerem intervenção cirúrgica ou engenharia genética, limitando a ampla aplicação dessas abordagens e a tradução para humanos.

O ultrassom é a única forma de energia disponível que pode penetrar de forma não invasiva no crânio e focalizar qualquer local dentro do cérebro com precisão milimétrica e sem radiação ionizante16,17. Esses recursos, juntamente com sua segurança, portabilidade e baixo custo, tornaram o ultrassom uma tecnologia promissora para neuromodulação em pequenos animais18,19, primatas não humanos20,21 e humanos16,22, embora seu mecanismo permaneça indefinido. Aqui, relatamos a indução não invasiva, precisa e segura de um estado semelhante ao torpor em camundongos por meio de estimulação ultrassônica remota no POA (Fig. 1a). Descobrimos que esta UIH estava associada à ativação ultrassônica do canal iônico TRPM2 expresso em neurônios POA associados ao torpor. Descobrimos o potencial envolvimento do hipotálamo dorsomedial como uma região cerebral a jusante e do tecido adiposo marrom como tecido efetor na regulação da HUI. Também demonstramos que a estimulação ultrassônica na POA induziu com sucesso a hipotermia em ratos, um animal não torpido.

 Tset or off when Tcore ≤ Tset. Core body temperature was recorded for a total duration of 30 h and the feedback-controlled ultrasound procedure continued for 24 h. The results showed that the feedback-controlled UIH maintained the mouse body temperature at 32.95 ± 0.45 °C for approximately 24 h (24.90 ± 0.63 h) (Fig. 3d,e). Mice showed reduced food intake and weight loss with feedback-controlled UIH compared to controls (Fig. 3f). The mouse's body temperature gradually recovered to a normal level (>34 °C) at 54.18 ± 35.56 min after the feedback-controlled UIH ended (Extended Data Fig. 2e). The closed-loop feedback control system reveals the great potential of ultrasound-brain interfacing technology for noninvasive, precise induction of UIH./p> Tset (Tset = 34 °C), the system turned the US on (peak negative acoustic pressure of 1.6 MPa; duty cycle of 50%; pulse repetition frequency of 10 Hz; stimulus duration of 10 s; inter-stimulus interval of 20 s; stimulus number of 6). When Tcore ≤ Tset, the US was off. As mice needed to wear the US transducer for a long duration, we designed a special rotary joint cable connector modified from a 360° rotating slip ring (Adafruit) to allow the US transducer cable freely to rotate as the mouse moved around. The total recording time was 30 h and the mice received feedback-controlled US stimulation for 24 h. Water and food were freely accessible to the mice. To compensate for the extra acoustic attenuation resulting from the bubble formation in the US gel after multiple stimulations, the acoustic pressure was increased by 10% and stimulus number was increased to 8 after 12 h of stimulation. The weights of the mice and food in the cage were measured before and after the experiment./p> (mean + 3 × s.d.) of that before US./p>5% mitochondrial counts were considered to exhibit extensive mitochondrial contamination and were filtered. Cells that had unique feature counts >7,500 were considered as doublets or multiples and were filtered. Cells that had unique feature counts <200 were also filtered. After filtering, all Seurat objects were merged. The ‘LogNormalize’ method with a scale factor of 10,000 was used for normalization. The ‘FindVariableFeatures’ function was used to extract the top 4,000 variable features. Data were scaled according to mitochondrial percent using the ScaleData function. The IEGs could potentially affect the clustering. Therefore, we removed all 139 IEGs58 from the list of feature genes before the following data processing pipeline. Next, principal-component analysis was carried out using the ‘RunPCA’ function. Using the top 40 principal components, the ‘The FindNeighbours’ function and the ‘FindClusters’ were used to identify the initial 34 clusters. Clustering results were visualized using UMAP plots./p> (mean + 3 × s.d.) of the signal before US stimulation. The temperature of the cell culture chamber was monitored using a fiberoptic thermometer. The tip of the fiberoptic thermometer was inserted at a location approximately 1 mm close to the transducer focus to avoid the interference of US wave propagation. For the blocker study, 5 µl antagonist 2-APB (TOCRIS) was added to 500 μl cell culture solution to a final concentration of 30 μM 1 min before the US stimulation./p>